食品照射に関する文献検索

照射効果（ＩＲＲＡＤＩＡＴＩＯＮ　ＥＦＦＥＣＴ）：食品に放射線を照射した場合の貯蔵、衛生化等の効果

発芽防止（玉ねぎ）

発表場所 : 食品照射研究運営会議（放射線照射による玉ねぎの発芽防止に関する研究成果報告書）
発行機関名 : （社）日本アイソトープ協会・食品照射委員会
発行年月日 : 昭和４７年６月３０日

（２）　玉ねぎの生化学的性質に及ぼす放射線の影響

（２） 玉ねぎの生化学的性質に及ぼす放射線の影響

１． 玉ねぎの成熟度と照射処理による発芽抑制効果

　ガンマー線照射により、玉ねぎの発芽抑制を行なう場合、試料とする玉ねぎの熟成の度合ならびに収穫後の保存方法により発芽抑制効果に変動の生じるおそれがある。そこで収穫時期を異にし、また適期に収穫してその後の保存温度を異にした試料について、７および１５ｋｒａｄ照射後の発芽抑制状態を観察した。

（１） 玉ねぎ（札幌黄）の熟度と発芽抑制効果

（ｉ） 試　　料

　札幌市東区東苗穂町産の玉ねぎ（札幌黄）（播種３月２０日、移植５月１０日。収穫適期９月７日）で、適期４週間前および２週間前のものはＭ球（横径５．８〜７ｃｍ）、適期および２週間後のものはＬ球（横径７〜９ｃｍ）を用いた。

（ｉｉ） 試験方法

　収穫適期（９月７日）、適期４週間前（８月１０日）、適期２週間前（８月２４日）、および適期２週間後（９月２１日）にそれぞれ収穫した玉ねぎ（札幌黄）を１週間風乾してから７および１５ｋｒａｄのガンマ線照射［北海道大学設置のＣｏ−６０γ線照射装置、線量率、３×４×１０・Ｅ（３）ｒａｄ／ｈｒ］を行なった後、室温（１５〜２５℃）および低温（約４℃）に貯蔵し、試料の熟度と発芽抑制効果との関係を調べた。

　各試験区５０個ずつ用い、６〜７カ月貯蔵を行ない、１、２、３、４、５、６および７カ月後にそれぞれの試験区について発芽および腐敗の有無を鱗茎の外部から調べた。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

　試料の熟度と発芽抑制効果については、非照射、７および１５ｋｒａｄ照射区を、室温（１５〜２５℃に調節された暗室）および低温（約４℃）に６〜７カ月貯蔵し、１、２、３、４、５、６、および７カ月後にそれぞれの試験区における発芽率を第（２）−１表に示した。

　適期および適期２週間後収穫の試料では、７および１５ｋｒａｄ照射によって、室温貯蔵においても、非照射区が６カ月後に５０％前後発芽しているのに対して完全に抑制することができた。しかし適期４週間前および適期２週間前収穫の試料では、照射による発芽抑制効果がかなり認められるが、完全ではなかった。また、１週間の風乾では乾燥が不十分であったかも知れないが、非常に高く腐敗率を示した。なお、低温室はやや湿度が高く、室温貯蔵のための暗室はやや乾燥気味であった。

　適期および適期２週間後収穫の試料、すなわち完熟玉ねぎ（札幌黄）鱗茎は、非照射室温貯蔵においても３〜４カ月は休眠を続け、５カ月目に破れ出すと見ることができよう。収穫時期すなわち熟度は非照射玉ねぎの貯蔵性対して重要であるが、ガンマ線照射による発芽抑制効果に対しても非常に重要でしかも臨界的因子と考えられる。

（２） 玉ねぎ（泉州黄）の収穫後保存の影響

（ｉ） 試　　料

　６月５日に収穫した泉州中高（Ｌ球、重量３００〜１９０ｇ、横径１０〜８ｃｍ）を泉南農業協同組合より６月２０日に入手し、外観的に良質球を選別して試料とした。

（ｉｉ） 試験方法

　上記試料は６月２４日に大阪府立放射線中央研究所において、コバルト６０ガンマ線を２０ｋｒａｄ／ｈｒの線量率で７ｋｒａｄおよび１５ｋｒａｄを照射した。また試料の一部は室温下および冷蔵下（０℃）に３カ月間貯蔵後に上記線量を照射した。冷蔵はボール箱詰めとし、室温貯蔵はポリエチレン製カゴに並べて行なった。照射した玉ねぎは主として室温に、一部は１５℃において照射効果を試験した。発芽率は外観上球より芽がでたものを発芽球として求めた。また球を切断し内部の状態を観察し、その状況は写真に撮った。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

　発芽抑制効果は、第（２）−２と第（２）−３表に示した。収穫当初、すなわち休眠中に照射した場合には、７ｋｒａｄおよび１５ｋｒａｄいずれの線量でも発芽は完全に阻止された。室温下で３カ月貯蔵後（内芽が伸長し始めている時）に照射した場合は、７ｋｒａｄおよび１５ｋｒａｄ区とも約５０％発芽した。ただし、冷蔵（０℃）下で３カ月貯蔵したものでは、７ｋｒａｄ区でわずかに発芽（３％）したのみであった。しかしこれらの一旦発芽した芽は照射後１〜２カ月間に枯死した。１５ｋｒａｄでは、完全に発芽は抑制された。発芽抑制された玉ねぎの内芽はすべて褐変した。その程度は収穫当初休眠中に照射したものと３カ月冷蔵後照射したものでは極小部分に限られ枯死状態であるが、室温貯蔵３カ月後に照射したものでは褐変部分が大きくかつ湿潤で、明らかに品質の低下が認められた。また照射玉ねぎで一旦発芽した後その芽が枯死したものでは内部の褐変部位はより一層大きく、腐敗球とほとんど区別ができない状態あった。このような内芽の褐変程度は７ｋｒａｄと１５ｋｒａｄの間に差異は認められなかった。

　以上は照射後室温に貯蔵した場合の試験結果であるが、一部の照射玉ねぎ試料につき照射後１５℃における発芽状態を試験し、上記室温の場合と同様の結果を得た。すなわち玉ねぎ泉州黄（泉州中高）を収穫直後に７および１５ｋｒａｄを照射した場合は、１５℃においても全く発芽しない。３カ月室温貯蔵後に７および１５ｋｒａｄを照射し１５℃においた場合は照射後２カ月で、それぞれ３６．６％および３４．５％の発芽がみられた。

　以上の結果から玉ねぎの発芽抑制を対象としたガンマ線照射は、収穫後休眠中に可及的速やかに行なった方が発芽抑制効果は大きく、照射までにある一定期間保存を必要とする場合は冷蔵（０℃）下で休眠期間を強制的に延長させることが必要と考えられる。休眠状態にある場合の発芽抑制に対する有効線量は７ｋｒａｄでよいと認められる。

２． 玉ねぎの休眠覚醒期の予知に関する研究

　前述のように放射線の玉ねぎに対する発芽抑制効果は、試料玉ねぎが完熟した適期に収穫され休眠中である場合に大きい。照射試料が実際にこのような照射に適した状態にあるか否か、またあらかじめ、適当な照射時期であることを予測できるか否かを検討するため、内芽の組織学的変化およびカロチノイド色素と還元性物質の含有量の変化ならびに各収穫時期における糖含有量の相違を検討した。

（１） 組織の変化

（ｉ） 試　　　料

　前記１．−（１）と同じく「札幌黄」の（イ）収穫適期、（ロ）収穫適期の２週間前、（ハ）４週間前の３時期に堀り上げたもの。

（ｉｉ） 試験方法

　（ａ）照　　射

　試料（イ）〜（ハ）それぞれ収穫後約１０日目に日本アイソトープ照射協同組合（栃木県都賀町）のＣｏ−６０γ線照射装置で７，０００および１５，０００ｒａｄ照射した。

　玉ねぎ各球に対する照射線量の差を可及的少なくするため、左右に並んだ照射線源のほぼ中央を通過するように、また玉ねぎの芽を上にほぼ垂直に１列に固定して照射した。

　（ｂ）貯　　蔵

　上記（イ）〜（ハ）の照射品および対照として（イ）〜（ハ）の非照射品を１５℃の恒温室に貯蔵した。

　（ｃ）固　　定

　照射直後から組織変化の明確に認められた時期まで１週間毎に各試料区について数球ずつ、玉ねぎ球のりん葉を除いた分球の部分をツエンケル氏液に２４〜４８時間固定し、同時間水洗いする。

　（ｄ）切片作成

　上記固定品を用い、生長点を１／２葉序でとりまく相対する葉の中心を通る厚さ約１０μの縦断切片を作成し、ツエンケル試液固定による後処理（０．５％ヨウ素、エタノール溶液、０．５％チオ硫酸ナトリウム水溶液で順次切片を洗浄する）ののち染色し、顕微鏡下で観察する。　（ｅ）染　　色

　塩化亜鉛・ヨウ素試液、フロログルシン・塩酸、酢酸メチルグリーン溶液およびスダンＩＩＩ溶液による膜質の試反応を行った。

（ｉｉｉ） 試験結果を考察

複瓠・ 　非照射品の発芽の時期および照射による組織変化の時期

┌───┬─────────┬─────────┬───────────┬───────────┐
│　試　│　　　　　　　　　│　　　　　　　　　│　　　　　　　　　＊　│　　　　　　　＊＊　　│
│　　　│　収　　穫　　日　│　照　　射　　日　│　　非照射品の発芽　　│　　照射による組織　　│
│　料　│　　　　　　　　　│　　　　　　　　　│　　　開始の時期　　　│　　　変化の時期　　　│
├───┼─────────┼─────────┼───────────┼───────────┤
│（イ）│１９７１．９．　６│１９７１．９．１８│　　　１２月下旬　　　│　　１１月中旬〜　　　│
│　　　│　　　　　　　　　│　　　　　　　　　│　　　　　　　　　　　│　　　　　　　　　　　│
│（ロ）│１９７１．８．２４│１９７１．９．　６│　　　１１月中旬　　　│　　１１月上旬　　　　│
│　　　│　　　　　　　　　│　　　　　　　　　│　　　　　　　　　　　│　　　　　　　　　　　│
│（ハ）│１９７１．８．１０│１９７１．８．２０│１０月下旬〜１１月上旬│１０月下旬〜１１月下旬│
└───┴─────────┴─────────┴───────────┴───────────┘
　（注）　＊：玉ねぎ球から０．５〜１ｃｍの芽が開出したものを２０ｋｇ入り１箱中数球以上認めた時期

　　　　＊＊：玉ねぎ球を縦断し生長点付近の変化を黄色のｚｏｎｅとして肉眼で認め得た時期

　非照射品の発芽は適期前収穫の（ロ）（ハ）では（イ）に比べ早い。照射品の組織変化はいずれも照射後２カ月経過時に起こる。なお、本実験における照射品の発芽は（イ）が最も少ない。

（ｂ）非照射品の生長点付近の試料

　（イ）では収穫後初期の時点には、生長点は１／２葉序に並んだ。葉鞘部と葉身部の分化の明らかでない幼葉１〜２枚とその周囲を葉鞘部と葉身部の分化した幼葉（以上将来、球の外に開出する葉（約６〜８枚によっておおわれ、その外側は貯蔵組織として発達した多肉質のりん片葉で囲まれる［第（２）−１〜３図］。

　収穫後約２週間した時点では、生長点は低い小丘状で１／２葉序にしたがって葉原基から分化する幼葉の発達が認められるにとどまる。しかしその後約２〜３カ月を経たいわゆる休眠終了（球から葉の開出）に先立ち、生長点周辺の幼葉は分球内で大きく伸長し、一方、生長点下部のごく若い茎の細胞は、並側分裂の結果、放射方向に膜が揃い、花茎として発達するきざしを見せる。

　試料（ロ）（ハ）は上記類似の構造および変化を示すが、収穫後約２週間の時点では、生長点をとりまく幼葉数が少なく、それら幼葉はきわめて短い。

　（ｃ）照射品の組織変化

（ｃ−１）変化の部位：試料および照射線量の違いに関係なく変化の部位および変化の時期はほぼ同じで、照射後約２カ月経過時に生長点やそれをおおう周辺の幼葉の基部を付着する部分（即間の短縮した茎）、内部に細胞膜質、細胞質の萎縮および変質した数細胞を認め、その後１〜２週間の間に急激に変化し、変質した細胞の範囲はひろがり、肉眼で観察しうる黄色のｚｏｎｅになる。このｚｏｎｅを形成する細胞の膜質は部分的に木化およびコルク化を示す。さらに経時にともない、このｚｏｎｅの上部に位置する生長点を含む細胞にも木化、コルク化などの膜質の変化が現われる。［第（２）−３〜４図］

（ｃ−２）変化の程度：試料（ロ）（ハ）では経時にともない茎の黄色のｚｏｎｅは、褐色に変化しその上部の幼葉も褐色となり、玉ねぎ球を縦断したとき、分球中心部の褐変として目立つが、（イ）では７カ月経過時（４月中旬）でも黄色のｚｏｎｅのままであり、この範囲は広がらず、また、ｚｏｎｅ上部の幼葉はおおむね白くみずみずしい。特に（イ）の１５，０００ｒａｄ照射品では、ｚｏｎｅは薄層で玉ねぎ球を縦断したとき分球中心部の変化は目立たない。

　いずれの試料でも７，０００ｒａｄ照射品より１５，０００ｒａｄ照射品の方が、ｚｏｎｅ上部の幼葉の褐変の範囲および程度は少なく、葉の開出した照射品でも、一見正常に見えながら照射による影響を受け、生長点付近は上記と同様の変化を起こしていた。

　上記の結果を総合すると、収穫適期前に収穫した場合には、照射後の組織褐変が著しいのに対して、適期収穫のものでは組織変化の範囲および程度が少なく、また適期収穫試料でも、休眠終了期に近づけば分球内の幼葉の伸長や花茎発達が始まることがわかる。そこで、発芽抑制効果と品質を保つ意味で適期に収穫した試料の休眠初期に照射処理を行なうことが、最も良好な結果を与えるものと組織学的に判断できる。

（２） カロチノイド色素および還元性物質の消長

（ｉ） 試　　　料

　前記１．−（１）の適期収穫２週間前の札幌黄を９月２日、適期収穫の札幌黄を９月１６日に入手した。貯蔵は常温、常湿下で行ない、適宜分析に供した。発芽抑制効果を観察するため第（２）−１図に記した各時点で７ｋｒａｄと１５ｋｒａｄを３０ｋｒａｄ／ｈで照射した。照射は大阪府立放射線中央研究所のＣｏ−６０γ線照射装置を用いて行なった。

（ｉｉ） 試験方法

　下記の分析には、第（２）ー６図に示したような内芽を使用した。カロチノイドの色素は、Ｄａｖｉｓらの方法により抽出し、ｈｅｘａｎｅ区分の吸光度（４４０ｍμ）で表わした。アスコルビン酸は、ヒドラジン法によって測定した。また、メタリン酸抽出液中の還元性物質をＳｅｐｈａｄｅｘ−Ｇ１０カラムを用い、展開液２％メタリン酸液で分離した結果、二つのピークを得た。標準のアスコルビン酸とグルタチオンを同条件下で分離した結果、そのうちの一つ（ｐｅａｋ　Ｉ）はグルタチオン、他の一つは（ｐｅａｋ　ＩＩ）は、アスコルビン酸に相当したので、ｐｅａｋ　Ｉはグルタチオンとして、またｐｅａｋ　ＩＩはアスコルビン酸として換算した。ただし、定量は、ヨウ素酸化法によった。

（ｉｉｉ） 試験結果および考察

　本実験結果は第（２）−７図にまとめた。

（ａ） カロチノイド色素

　適期収穫２週間前のもの、適期収穫のものにおいても、貯蔵中急激に増加した。発芽抑制効果との関係をみると、実験開始時の含量の約２倍になったところに照射したものでは、図では照射日３、４に当たる頃、７ｋｒａｄと１５ｋｒａｄ（以下照射区と一括）とも貯蔵中若干発芽するものが認められるようになった。それ以後の照射では、明らかに発芽抑制効果は劣った。

（ｂ） アスコルビン酸

　両収穫時期のものにおいても、貯蔵初期の変動の少ない時期の後、急激に増加する。発芽抑制効果との関係をみると、アスコルビン酸含量が増加し始め、その含量が約３０ｍｇ／１００ｇｆｗに達する頃に照射したものでは、図では、３、４の照射日のもの、照射区で貯蔵中若干発芽するものが発生した。それ以後では照射による発芽抑制効果は明らかに劣った。

（ｃ） Ｓｅｐｈａｄｅｘ　カラム分離した還元性物質

　Ｐｅａｋ　Ｉ，ｐｅａｋ　ＩＩ　ともそれらの含量の増加傾向も、また発芽抑制効果との関係も、アスコルビン酸について得られた結果とほぼ同様であった。ただし、ｐｅａｋ　Ｉ　はその傾向は、後にずれるようであった。

　以上の結果から内芽における成分のうちとくにアスコルビン酸含量の消長とγ線照射による発芽抑制効果の低下との間に関連性を求めることが妥当と考えられた。すなわち、内芽のアスコルビン酸含量が３０ｍｇ／１００ｇｆｗに達したものでは、７ｋｒａｄおよび１５ｋｒａｄの線量の照射では、その後の貯蔵中に発芽するものが発生することが認められ、内芽のアスコルビン酸含量の変動の少ない時期でその含量が約２０ｍｇ／１００ｇｆｗ以下では、照射するとほぼ完全に発芽が抑制されることが期待できることがわかった。

（３） 収穫時期と糖含有量の関係

（ｉ） 試　　　料

　前記　１．−（１）の札幌黄の収穫適期４週間前、２週間前、適期および適期２週間に収穫したものを試料とした。

（ｉｉ） 試験方法

　ソモジ変法による糖の定量を行なったが、できる限り簡便な方法をということで種々検討し、予備実験の結果も勘案した結果、次の手順を採用した。

　玉ねぎ５個から根と黄銅色の外皮を除き、ステンレス製包丁で細片としたなかから試料１００ｇを取り、沸騰水約２００ｍｌ中に加えて３分間煮沸を続けた後、ミキサーでホモジネートにする。晒し木綿で搾り出し、抽出液は定容フラスコを用いて５００ｍｌにする。そのうち１００ｍｌを取り、３０％酢酸鉛溶液１０ｍｌを加えて除蛋白、過剰の鉛は３％シュウ酸ナトリウム溶液を加えて除去した後、定容フラスコを用いて１００ｍｌにする。そのうち、２０ｍｌを２５０ｍｌに希釈し、この溶液をソモジ変法による還元糖の定量に用いた。別に２０ｍｌを取り、水１００ｍｌおよび５．５％　シュウ酸溶液１２ｍｌを加え、沸騰湯浴中で２５分間加水分解し、放冷後水を加えて２５０ｍｌに希釈、ソモジ変法により糖の定量を行ない、全糖とした。玉ねぎ鱗茎の個体差を考慮して、さらに玉ねぎ５個より上記の手順を繰り返し、得られた定量値が大きくかけ離れた場合には、さらに定量を繰り返すこととした。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

　全糖および還元糖を定量した結果は第（２）−４表のようであった。表に示されるように、全糖については適期４週間前から適期にかけて殆ど変化はなく、適期以後はかえってわずかながら減少する傾向があるのに対して、一方、還元糖はわずかながら増加する傾向が見られた。いずれにせよ、玉ねぎ鱗茎の個体差を考慮に入れると、糖含量のみで適期を判断することはいささか困難である。

３． 照射処理が玉ねぎの成分および腐敗菌におよぼす影響

　発芽抑制を目的として玉ねぎにガンマ線照射を行なったとき、品質と風味に関連して玉ねぎの諸成分や酵素活性が照射直後あるいはその後の貯蔵中にどのような影響を受けるかを知るため、下記の諸項目について分析あるいは測定を行い、また照射した玉ねぎが微生物汚染により腐敗し易くなるか否かの検討を行った。

（１） 呼　　吸

（ｉ） 試　　料

　適期収穫した泉州黄玉ねぎに２０日後、７および１５ｋｒａｄの照射を行い、以後室温に保存した。一部試料は収穫後室温および４℃に冷蔵し、３カ月後に照射を行い、以後室温で保存した。

（ｉｉ） 試験方法

　照射直後および貯蔵中数カ月にわたる呼吸の変化を試料全体について行い、これと平行して収穫直後照射試料については組織切片による呼吸量の測定も行った。試料全体の呼吸はＣｌｙｐｏｏｌ　ａｎｄ　Ｋｅｅｆｅｒ　の方法による通気式呼吸測定法によって室温下で行ない、放出される炭酸ガスを３０℃下でＣＯ２吸収管（１００ｐｐｍ　ＮａＨＣＯ３　を２５ｍｌ、２５０ｐｐｍ　フェノールレッド　０．５ｍｌを含む）で吸収させ、その際生ずる炭酸イオンの変動にもとずくフェノールレッドの色調の変化を、波長５５８ｍμで測定し、標準ＣＯ２で求めた検量線より炭酸ガス濃度を測定し、次式によってＣＯ２ｍｇ／ｋｇ／ｈｒとして算出した。

　ＣＯ２ｍｇ／ｋｇ／ｈｒ

　　＝（ＣＯ２％×Ｆ／１００Ｗ）×（２７３／Ｔ）

　　　　　　　×（Ｐ／７６０）×（４４／２２．４）

　Ｆ：通気速度（ｍｌ／ｈｒ、本実験では６，０００ｍｌ／ｈｒ）

　Ｔ：試料室の絶対温度、

　Ｐ：大気圧（ｍｍＨｇ）

　Ｗ：試料重量（Ｋｇ）

　組織切片の呼吸は底盤部とりん葉部に分け、ワールブルグ検圧計を用い常法により３０℃下で測定した。組織切片の大きさは、底盤部については、５×５×１ｍｍとし、りん葉部については幅１０ｍｍ長方形のりん葉を作りこれをさらに厚さ１ｍｍに切ったものとした。緩衝液は、１／１０ＭＫＨ２ＰＯ４をそのまま用いた。組織切片の呼吸量は酸素吸収量でもって表示した。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

　試料全体の呼吸に対する照射の影響は第（２）−５表および第（２）−６表に示す。

　照射により試料の呼吸は数時間後に増大するが、その後は、急速に減少し、対照区に近づく。このような傾向は収穫当初照射したもの、３カ月貯蔵後照射したものについても同様であるが、照射の呼吸への影響は３カ月貯蔵したものにおいて、収穫当初のものより大きい。組織切片の呼吸は初のものについて経時的に測定したが、貯蔵中１５ｋｒａｄ区のりん葉部の呼吸が、対照区のそれに比較してやや大きい傾向が認められた以外は、試料全体の呼吸の傾向とほぼ同様であった［第（２）ー７表］。

（２） 香味成分分解酵素

（ｉ） 試　　料

　上記　３．−（１）と同一試料を用いた。

（ｉｉ） 試験方法

　玉ねぎの特徴である特有な味はＡｌｋｙｌ　ｃｙｓｔｅｉｎｅ　ｓｕｌｆｏｘｉｄｅが酵素によって分解形成されるものとされている。この酵素（Ａｃｓｏｌｙａｓｅと略す）の活性は生成するピルピン酸を定量して測定した。酵素液は、玉ねぎ５個をとり、各々そのディスクを除去したものを放射状に切った切片から均一にとって５０ｇを試料とし、これに０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ６．８）５０ｍｌ加えて１００ｍｌとした。この原液を反応直前に０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ８．０）で２倍に希釈して酵素液とした。

　基質液（２０μＭ／ｍｌ−ｎ−ｐｒｏｐｙｌｃｙｓｔｅｉｎｅ　ｓｕｌｆｏｘｉｄｅ）１ｍｌ、酵素液１ｍｌ、リン酸緩衝液（０．１Ｍ、ｐＨ　８．０）　２ｍｌの組成の反応液を３７℃２０ｍｉｎ　反応させた後、１０％ＴＣＡ　４ｍｌを加えて反応を停止させた。別に基質液の代わりに水を用いた反応液を　ｂｌａｎｃ　ｔｅｓｔ　として同様に反応させた。

　反応液をろ過して５０ｍｌとし、これより２ｍｌとり２．４−ジニトロフェノール液（０．０１２５％）１ｍｌを加え、３７℃、１０ｍｉｎ反応させ、冷却後０．６Ｎ−ＮａＯＨ５ｍｌを加えてよく攪拌し４２０ｍμで比色した。

　Ａｃｓｏｌｙａｓｅの活性はピルピン酸ｍｍｏｌｅ／２０ｍｉｎ／玉ねぎ１００ｇで表示する。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

　収穫直後照射した試料に関する結果は、第（２）−８図に示す。照射直後に本酵素活性を調べた結果非照射のものに対し、７ｋｒａｄ照射では８２％、１５ｋｒａｄ照射では５８％に活性が低下した。

　照射後室温に放置してＡｃｓｏｌｙａｓｅの活性を経時的に測定すると非照射のものは、最初の１カ月間に活性増加を示すが、後は漸減の傾向を示した。一方、７ｋｒａｄ、１５ｋｒａｄ照射したものでは、照射によって低下した活性が回復し、３カ月で活性の最高を示し、後は減少した。照射したものの３カ月後の活性は実験開始時における非照射のものと同じレベルまで回復した。

　収穫後、３カ月室温貯蔵した場合、照射により活性は収穫直後照射の場合と同様に低下し、後は漸減の傾向をとる。

　しかし、７ｋｒａｄ照射したもののみ照射後１カ月は、活性の回復が見られた［第（２）−９図］。３カ月後低温に保存した後、照射した場合も傾向はほとんど同じで、７ｋｒａｄ照射したものの活性がみられる。

　玉ねぎ特有の香味に対する放射線照射の影響については、その香味形成に関与する基質と酵素の両者に対する影響があると考えられる。酵素については、上記の結果から７および１５ｋｒａｄ　の線量で照射直後には低下が見られた。これは収穫直後でも３カ月貯蔵した試料でも同様であった。このような酵素活性の低下が玉ねぎの香味にどの様に影響するかは、最終的には香味試験によらなければならないが、酵素活性については、照射直後は上記のように下がるが、照射後１カ月位でも活性の回復があり、また非照射の試料でも収穫後１カ月を頂点として貯蔵により、酵素活性が漸減することが見出されているので、７および１５ｋｒａｄ　程度の照射では非照射のものに比して実際上香味形成にあまり影響ないものと考えられる。

（３） 香気成分含量

（ｉ） 試　　　料

　前記　３．−（１）と同一試料を用いた。

（ｉｉ） 試験方法

　各試料区についてパネルによる官能検査、ｈｅａｄ　ｓｐａｃｅ　ｖａｐｏｒ　のガスクロマトグラフィーによる揮発成分の測定を行なった。さらにブルカプタン（主として　ｎ−プロピルメルカプタン）を　Ｒｕｈｅｍａｎ’ｓ　ｐｕｒｐｌｅ−Ｈｇ　塩法により定量、カルボニルを　２．４ジニトロフェニルヒドラゾン法によって測定した。

（ａ） パネルによる官能検査

　それぞれの区分について発芽していない健全な玉ねぎの外皮を除去してスライスにし、ミキサーにかけて得られたジュースから２０ｇを１５０ｍｌの広口ビンにとり、訓練されていないパネル約２０人に非照射のスタンダードと０、７、および１５ｋｒａｄ照射した玉ねぎについてスタンダードとの識別、においの強さの比較を行わせた。

（ｂ） Ｈｅａｄ　Ｓｐａｃｅ　Ｖａｐｏｒ　のガスクロマトグラフィー

　それぞれの試料について発芽していない健全な玉ねぎの外皮を除去して各部分が含まれるように楔形に約３０ｇを切り取り、細片摩砕して１００ｍｌの三角フラスコにとり、栓をして室温に１〜２時間放置して得られる　ｈｅａｄ　ｓｐａｃｅ　ｖａｐｏｒ　のガスクロマトグラフィー（ＧＬＣ）を行なった。Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ８１０（ＦＩＤ）　ガスクロマトグラフ（理化学研究所）を使用し、カラムには　Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ　標準カラム　Ｄｉｉｓｏｄｅｃｙｌ　ｐｈｔｈａｌａｔｅ（ｓｅｍｉ−ｐｏｌａｒ）、Ｃａｒｂｏｗａｘ　１５４０（ｐｏｌａｒ）、および　Ａｐｉｅｚｏｎ　Ｍ（ｎｏｎ−ｐｏｌａｒ）の３種類を用いた。カラムのサイズはすべて１／８インチ×６フィート、カラムの温度は約５０℃と約１２０℃。

（ｃ） メルカプタンの定量

　玉ねぎ２個から得られたジュースから１００ｇをとり、１００ｍｌの飽和食塩水を加えて第（２）−１０図に示す抽出装置を用い、エーテル（金属　Ｎａ　を加えて蒸留精製）抽出を行なった。ジュースにしてエーテルを加えるまでの時間は約２０分、抽出は６時間行なった。氷と食塩の寒剤で冷却したトラップには測定し得るほどのメルカプタンは検出されなかった。定量法はメルカプタンとＨｇの反応により遊離する　Ｐｕｈｅｍａｎ’ｓ　ｐｕｒｐｌｅ　を５７０ｍμの吸収を測定して求める方法である。

（ｄ） カルボニルの測定

　上記の方法により得られたジュース（玉ねぎ２個）から１５０ｇをとり、１５０ｍｌの水を加えて第（２）−１１図に示す装置を用い、室温または１００℃で空気または　Ｎ２を通じて発生する揮発性カルボニルを２．４−ジニトロフェニルヒドラジン塩酸溶液（２ｍｇ／ｍｌ　ｉｒ２ＮＨＣｌ）のトラップに導き、生成したヒドラゾンの沈でんの量を測定し、また薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）によりカルボニルの同定を行なった。また不揮発性カルボニルについても定性的に検索を行なった。なお通気時間はすべて６時間とした。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

　３カ月室温に貯蔵したものでは、約６５％、低温貯蔵では、約７．５％が健全であった。

（ａ）　パネルによる官能検査の結果は、パネルが馴れていないせいもあって、照射と非照射の試料の識別が悪かったが、識別できたパネルでは、線量が増すにつれて香気が弱くなることが認められた。

（ｂ）　Ｈｅａｄ　ｓｐａｃｅ　ｖａｐｏｒ　の　ＧＬＣ　の結果は、Ｄｉｉｓｏｄｅｃｙｌ　ｐｈｔｈａｌａｔｅ　カラムで分離したクロマトグラムを例として第（２）−１２〜１４図に示すが、７および１５ｋｒａｄの照射ではいずれも非照射のものとの間に定性的な差があるようには見えない。３カ月低温貯蔵と室温貯蔵の試料区分の間には定性的にも差があるように見えるが、なお検討の余地がある。

（ｃ）　メルカプタンの定量の結果は第（２）−８表に示すが、照射線量を増やしてもはっきりした差は見られず、室温に長期間貯蔵すると減少するが、低温貯蔵ではかえって増加し、室温貯蔵のものでも秋になって気温が低くなるにつれて増加する傾向が見られた。

（ｄ）　カルボニル測定の結果は第（２）−９表に示すが、照射線量を増してもはっきりした差は見られなかった。なお揮発性カルボニルの２．４−ジニトロフェニルヒドラゾンのＴＬＣならびにａ−ケトグルタール酸との反応により再生されたカルボニルのＧＬＣの結果、揮発性カルボニルの主要なものはプロパナールとアセトアルデヒドであった。前者の量が最も多い。他にＴＬＣのクロマトグラムではさらに３〜５個のスポットが認められた。また留出残液からピルビン酸が検出された。

（４） ポリフェノールオキシダーゼ

（ｉ） 試　　料

　前記　３．−（１）と同一試料を用いた。

（ｉｉ） 試験方法

　ポリフェノールオキシダーゼの活性は、玉ねぎ５個をとりディスクを除いた後放射状に切断したものから均一に５０ｇをとり、これを細切りにし、５０ｍｌのｐｈｏｓｐｈａｔｅ　ｂｕｆｆｅｒを加えて低温でホモジナイザーにて１分３０秒処理し、三枚重ねのガーゼでこした液に　ｂｕｆｆｅｒ　を加えて１００ｍｌにしたものを酵素液とした。また別の実験では玉ねぎ１０ｇをアセトン粉末とし、これに０．０５Ｍ　ｐｈｏｓｐｈａｔｅ　ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ．７．３）　１５ｍｌ　を加え低温で遠心分離した上澄みを酵素液とした。活性はコーヒー酸を基質として酵素電極法によって測定した。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

　ポリフェノールオキシダーゼの活性は非照射試料とも極めて弱く、照射の効果を判定することは不可能であり、収穫直後および３カ月室温貯蔵後、照射のいずれにおいても同様であった。このことは、少なくとも照射により酵素活性が著しく強まることはない事実も示している。なお、酵素液基質の調整法を変えても効果の判定は不可能であった。

（５） 糖　含　量

（ｉ） 試　　料

　北海道産札幌黄に７ｋｒａｄの照射を行いその後室温で３カ月間貯蔵して、照射直後および貯蔵後の試料を非照射試料とともに分析試料とした。

（ｉｉ） 試験方法

　発芽や腐敗していないものについて、褐色化した表皮と根を除き、１０コづつの３区分に分けた。１区分について３回の定量を行なう。従って、１試料について９回の定量を行なうこととなった。この９回の総加平均を定量値とした。この場合の統計処理による標準誤差は２％以下であった。

　玉ねぎの可食部を小さく切り、等量の水と共にミキサーで均質化させる。そのホモジネート２０ｇに３００ｍｇのＣａＣＯ３と９９％ＥｔＯＨを６０ｍｌ加えて１時間加熱還流させて糖の抽出を行い、ろ別した。残渣を更に１回７６％ＥｔＯＨで抽出し、抽出液をあわせてその一部を還元糖の定量に供し、残りは塩酸で２４時間室温で加水分解し、全糖の定量に供した。［第（２）−１５図］

　糖の定量は、Ｓｏｍｏｇｙｉ−Ｎｅｌｓｏｎ　の比色法によって　Ｇｌｕｃｏｓｅ　換算量として定量した。

　Ｇｌｕｃｏｓｅ，Ｓｕｃｒｏｓｅを用いて、調整および定量の全操作を行なった結果、それぞれの回収率はＧｌｕｃｏｓｅは９８〜１００％、Ｓｕｃｒｏｓｅは９７〜９９％であった。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

　第（２）−１０表のように全糖は照射と非照射には大差は見られない。また貯蔵中の変化も殆どない。照射直後の還元糖量は非照射試料に比較して少ないが、３カ月貯蔵後には逆に増加した。然し、その差は有意さとはいえないほどの僅かの差である。なお、糖のペーパークロマトグラムは照射・非照射試料に差を示さなかった。

（６） ビタミンＣ

（ｉ） 試　　　料

　上記　３．−（５）と同一試料を用いた。

（ｉｉ） 試験方法

　照射直後および３カ月貯蔵したもの、およびそれぞれの対照のビタミンＣの定量を行ない、照射効果を調べた。ビタミンＣの定量法には２．４ージニトロフェニルヒドラジン法を使用し、酸化型と総ビタミンＣとを直接定量し、還元型ビタミンＣは計算により求めた。実験は６回反復し、平均値とその標準偏差を求めた。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

　７ｋｒａｄ照射直後の還元型Ｃの価は非照射の収穫直後に比べやや小さいが、直接定量した酸化型で３〜７％、総ビタミンＣで１０％以上の誤差があるので、計算で求めた還元型ビタミンＣの価にもこれらが含まれる。従って両者の価の間には大差はなく、照射の影響はないと考えられる。同様に７ｋｒａｄ照射し、３カ月貯蔵したものにも照射の影響はないと考えられる。

　然し、非照射の収穫直後と３カ月貯蔵を比較すると、３カ月貯蔵で還元型が減少し、酸化型が増加する傾向がある。

　照射試料も同様な傾向を示すので、照射の影響よりも貯蔵の影響の方が大きいと考えられる。

（７） 全窒素およびアミノ酸

（ｉ） 試　　　料

　前項同様　３．−（５）　と同一試料を用いた。

（ｉｉ） 試験方法

　試料玉ねぎ１０コをとり、その各々の外皮およびディスクを除去し、均一に組織を切り１５０ｇを１００ｍｌの水とともに２分間ブレンダーで磨砕し、ガーゼで濾過後全量を５００ｍｌとした。これを１０・Ｅ（４）ｒｐｍ、１５分間遠心分離し、上澄液を濾過助剤を用いて吸引濾過した。このうち２００ｍｌをとり、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ　１Ｒ−１２０Ｈ　型に吸着させ、水洗後３ＮＨＣｌ　２５０ｍｌで溶出、最初の２５０ｍｌをとり、この溶出液中の全窒素量をβーナフトキノンスルフォン酸による比色法で定量した。

　この塩酸溶出液２０ｍｌをとり減圧乾固し、このものについて、Ｂｅｃｋｍａｎ　式アミノ酸自動分析機を用いて、遊離アミノ酸の分析を行なった。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

　各試料中の全窒素およびアミノ態窒素量は次の通りである。

　　　　　　　　試　　料　　Ｉ（照射直後）

　　　　　　　全窒素ｍｇ／　　　　　　アミノ態窒素ｍｇ／

　　　　　　　　　　玉ねぎ１００ｇ　　　　　玉ねぎ１００ｇ

非　　照　　射　　　１０３．０　　　　　　　７４．０

７ｋｒａｄ

　　　照　　射　　　　９５．５　　　　　　　６６．４

　　　　　　　　試　　料　ＩＩ（照射後室温に３カ月貯蔵）

　　　　　　　全窒素ｍｇ／　　　　　　アミノ態窒素ｍｇ／

　　　　　　　　　玉ねぎ１００ｇ　　　　　玉ねぎ１００ｇ

非　　照　　射　　　１０２．５　　　　　　　５６．３

７ｋｒａｄ

　　　照　　射　　　１０２．３　　　　　　　５９．８

　次に遊離アミノ酸量は、第（２）−１２表に示した。ただし各アミノ酸量は玉ねぎ１００ｇ中のｍｇ数で示した。

　これをみてわかるように照射直後のもの、照射後室温に貯蔵したものについても照射・非照射の試料の間で顕著な差は認められなかった。

（８） 微生物生菌数とその放射線感受性

（ｉ） 試　　　料

　前項同様、３．−（５）と同一試料を用いた。

（ｉｉ） 試験方法

　それぞれ照射直後を照射後３カ月間室温貯蔵したものを外側と内側とに分けて生菌数測定用試料とした。

　各区とも２０個宛の玉ねぎからの試料を　Ｔｗｅｅｎ８０　の０．００５％溶液１ｌを加えて振盪し、その上澄液を加熱（８０℃１５分間）したものと、加熱しないものとに分けて生菌数ブイヨンおよび麹エキスの２種の培地を用いて測定し、試料１ｇ当りの生菌数を求めた。

　また、放射線感受性の測定のため、玉ねぎに付着している微生物の分離は寒天培地上に形成される単一コロニーについて３回行ない、リン酸緩衝液中でＣｏ−６０γ線により照射して生存曲線をもとめた。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

（ａ） 照射による生菌数の変化

　７ｋｒａｄ照射したものおよび非照射の対照について生菌数を測定した結果を第（２）−１３表に示す。

　予備実験の結果によれば、約１０倍程度の生菌数値のバラツキは誤差範囲以内と考えられるので、測定菌液を加熱しない場合および加熱した場合ともに７ｋｒａｄ　照射による生菌数の変化は認められない。

　照射直後の試料について７ｋｒａｄ照射による生菌数の明らかな減少が認められないことは、実用上玉ねぎの発芽防止線量では殺菌効果は期待し得ないものと解される。また同様の傾向が照射後３カ月間貯蔵したものにも認められることは、照射した玉ねぎにとくに微生物が繁殖し易いとはいえないことを意味するものと思われる。

（ｂ） 分離された微生物の放射線感受性

　玉ねぎ試料のミクロフロラについて主要な微生物を分離して、そのγ線に対する生存曲線を求めると第（２）−１６図の如くなる。それより求めた　ＬＤ１０　値を第（２）−１５表に示す。

　これによれば、γ線に対する感受性の高い菌では７ｋｒａｄ　の線量で生存菌数が１／１０になるが、それより抵抗性の大きな菌が多いので、７ｋｒａｄの線量では全体の菌数が大きく変化しないことが理解される。

（９） 腐敗菌の感受性

（ｉ） 試　　　料

　収穫直後の泉州中高を室温および低温（５℃）に貯蔵した。一部はただちに　７および１５ｋｒａｄのγ線照射を行ない、以後室温に放置した。貯蔵中の試料は３・５カ月後に７および１５ｋｒａｄの照射を行なった。

（ｉｉ） 試験方法

（ａ） 感染試験

　供試玉ねぎは外皮を除き水洗した後縦に４つ割とし、それぞれ一方の切断面に細菌または糸状菌芽胞の懸濁液を殺菌ガーゼを用いて塗布し、他の一方は塗布せず対照とした。塗布後の試料はガーゼを敷いた深型シャーレ内に１個ずついれ、さらに蓋内面にろ紙を置いて、２７〜３０℃に静置し、殺菌水をガーゼとろ紙に含ませてシャーレ内の湿度を飽和状態に保たせた。以後、連日観察を行なうとともに４〜６日後に侵害度の測定を行なった。

（ｂ） 供試微生物

　玉ねぎを汚染、侵害する可能性のある次の７菌株について感染試験を行なった。

　　　　　　　菌　　名　　　　　　　　　　出　　所

ｉ　　　Ｂｏｔｒｙｔｉｓ　ｓｐ　　　農業技術研究所より分与

ｉｉ　　Ｃｅｒａｔｏｃｙｓｔｉｓ

　　　　　ｆｉｍｂｒｉａｔａ　　　　　名古屋大学より分与

　　　　　Ｅｌｌ　＆　Ｈａｌｓｔ

　　　　　黒班病菌

ｉｉｉ　Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　　　理化学研究所にて玉ねぎ

　　　　　ｎｉｇｅｒ　　　　　　　　　より分離

ｉｖ　　Ｔ−Ｎｏ．１（球菌）　　　　　　　同　　上

ｉｖ　　Ｔ−Ｎｏ．２（桿菌）　　　　　　　同　　上

ｖｉ　　Ｔ−Ｎｏ．３（球菌）　　　　　　　同　　上

ｖｉｉ　Ｔ−Ｎｏ．６（球菌）　　　　　　　同　　上

　上記のうち、細菌および黒班病菌は、馬鈴薯汁加蔗糖培養したものを　Ｂｏｔｒｙｓｉｓ　および　Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　は同じ培地の寒天斜面上に生育させ、その分生芽胞をリン酸緩衝液に懸濁したものを感染試験の種菌とした。

（ｃ） 侵害度の判定

　感染試験中の試料は肉眼的に切断面の軟化、変色の程度および微生物の生育状況を検査し、記録するとともに、パーオキシダーゼ作用を測定、比較した。すなわち、試料の微生物塗布面、非塗布面に先ず、２％過酸化水素水を、次いで２％ピロガロル水溶液、または１％ベンチジンの５０％エタノール溶液を、ガーゼ片を用いて注意深く塗布し、それぞれ黄褐色または青黒色の呈色が発見されるまでの時間を測定し、また最大呈色の度合を観察、かつ、カラー写真に記録した。

（ｉｉｉ） 試験結果と考察

　３カ月貯蔵の前後とも、本実験条件では黒班病菌、Ｔ−Ｎｏ．１菌およびＴＮｏ．６菌の３株のみが非照射玉ねぎの切断面に軟化、変化を生じ、菌の侵害を示すが、他の菌株ではほとんど侵害が見られない。７ｋｒａｄ、１５ｋｒａｄ照射試料についても、前記３株菌のみが侵害し、何らの相違も見られない。従って元来感染し難い菌がγ線によって侵害し易くなることはないと結論される。

　前記３菌株を用いて感染試験を行なった結果、対照切断面ではピロガロル呈色度の場合２〜３分間で、ベンチジン呈色の場合１〜１．５分間で発色が最大となった。菌塗布面では発色時間がやや遅れるほか、呈色の度合が少なく、明らかに淡い色を示す。

　しかしながら、対照との間に見られる呈色上の差は、試料玉ねぎの貯蔵の有無、貯蔵温度ならびにγ線照射の有無、その線量によらずほとんど一様であって、明瞭な区別はつけ難い［第（２）−１６図］。

　肉眼的観察も同様な結果を示し、少なくとも１５ｋｒａｄ照射程度では、玉ねぎの微生物に対する感染性はほとんど影響されていないものと判断される。

４． 玉ねぎの吸収線量の測定に関する研究

　食品に対する放射線照射において困難の大きい問題の一つは線量測定の問題である。元来、線量測定方法そのものに、原理的に各種の物理的、化学的方法があって、相互間の測定値が必ずしも一致しない。その上に食品照射の特質上、試料の形態、包装、線量率などが異なるので常に望ましい線量測定方法が利用できるとは限らない。また大量の試料の照射を行なうときには、照射効果を均一化せしめるため、実際に試料各部の吸収線量を正確に測定せねばならない。そこで実際に個々の玉ねぎおよび包装箱に入れた状態でガンマ線照射を行ない、各種線量測定方法の比較、玉ねぎによる吸収の程度ならびにバルク包装での線量分布などを検討した。

（１） 線量測定方法と玉ねぎによる吸収

（ｉ） 照射装置

　名古屋大学設置のＣｏ−６０ガンマー線照射装置（線源　Ｃｏ−６０　４，０００Ｃｉ）を使用した。

（ｉｉ） 照射方法

　線源より５０ｃｍおよび２００ｃｍの円周上試料台上１０、１５ｃｍに線量計を並べ、その間の線量と、その前に玉ねぎを切断し、厚さ５、１０、２０ｃｍの層としたもの、水の筒を同じ厚さとしたもの及び玉ねぎを丸のまま２個、４個並べた場合の線量の変化を調べた。

（ｉｉｉ） 線量測定方法

（ａ）ガラス線量計（東芝蛍光ガラス、ピース８×４．７ｍｍ

　　　　　　　　　　及び針１ｍｍφ×６ｍｍ）

（ｂ）鉄線量計（Ｆｒｉｃｋｅ）

（ｃ）電離槽型線量計（Ｖｉｃｔｒｅｅｎ社　Ｒａｄｃｏｎ）

　ガラスは名大農学部設計改造による蛍光線量計及び東芝蛍光線量計による蛍光光度測定と吸収光（４００ｍｋμ）の光度測定を行なった。

（ｉｖ） 結果と考察

　まず、Ｒａｄｃｏｎ線量計とＦｒｉｃｋｅ鉄線量計を比較したところ良く一致するので、これで得られた線量を標準にして、ガラス線量計の信頼度、玉ねぎ試料による線量吸収の度を測った。

（ａ）　東芝蛍光ガラスの蛍光光度と線量との関係は、名大農学部式で測定した場合、ピースでは放射線状となり、針では８，０００Ｒ付近まで直線を示した。また、線源より５０ｃｍと２００ｃｍ　の所で照射したもので線量率の差は認められなかった。［第（２）−２０図］

（ｂ）　同じガラスのピース型のものを用い、４００ｍμの吸光度と線量との関係を求めた結果１０，０００Ｒまで直線を示し、線量率の差もなく、結果はよく一致した。［第（２）−２１図］

（ｃ）　東芝ガラス線量計用測定器を用いて蛍光光度と照射線量の関係を調べたが、線量率による差異がみられ、また、ピース、針もそれぞれ２０００Ｒ、３０００Ｒ付近までしか直線がえられず、結果の振れがかなり大きかった。

（ｄ）　これらの結果から、最も信頼のおけるａ、ｂ式でのガラス線量計及びＦｒｉｃｋｅ　線量計を用いて第（２）−２２図のように、玉ねぎを前においた場合の低下を調べると（線量計６００Ｒ／ｈｒ）、次のように線量が低下した。

　　玉ねぎ　　　　厚　　さ　　　　１０ｃｍ　　　　６９％

　　　〃　　　　　　〃　　　　　　２０ｃｍ　　　　５０％

　　　〃　　　　　そのまま　　　　　２　個　　　　６５％

　　　〃　　　　　　〃　　　　　　　４　個　　　　４０％

　この低下率は、同じ厚さの水の層に比べると低下の程度はやや少なかった。水の場合は、１０ｃｍで５．９％、２０ｃｍで３４．５％となる。［第（２）−２３〜２４図］

（２） バルク照射における線量測定

（ｉ） 照射装置

　前項４．−（１）と同じ装置

（ｉｉ） 照射方法

　試料をダンボール箱に入れ、包装箱内の線量分布を調べ、また、試料を５、１０、２０、４０ｃｍ等の厚さに水平に並べ、試料の吸収線量を、そのまま及び回転しつつ測定した。

　また、包装材料としては、板、ポリエチレン、段ボールを用い、吸収線量を測定比較した。

（ｉｉｉ） 線量測定方法

　線量測定は、鉄及びセリウムの化学線量計とガラス線量計（東芝及びポシュロム）を比較検討した。

（ｉｖ） 結　　果

　試料の吸収線量は前項の試験と同じ結果を得た。［第（２）−２５図］

　バルク包装における試料の分布状態をガラス線量計で検討した結果、照射処理に差し支えない程度に均一で問題にする必要がないことが分かった。また、板、プラスチックフィルム、段ボールなど包装材料の影響も線量測定の上で傷害にならないことが分かった。［第（２）−１６〜１８表］

　以上、玉ねぎの発芽抑制を目的とするγ線処理の実用化の基礎研究として、主にガラス線量計、Ｆｒｉｃｋｅ鉄線量計を中心に測定法の検討、試料の吸収線量の実測について試験研究を行なった。

　この結果については発芽防止処理のための　１×１０・Ｅ（４）Ｒ　前後の照射の線量測定としては、ガラスの蛍光で測定することは標準曲線で得られないために不正確になる。ガラス針を用い改造型の蛍光のガラスは一定に保持しにくい点や、端が破損し易い欠点があり、この点について針のためのホルグーを改造する必要がある。ガラスピースは４００ｍμの吸収で測定する場合測定しやすくまた再現性も良く大体満足すべき結果を与えた。

　しかしこれらの線量用ガラスは、いずれも高価なことと退色現象があることなどが欠点である。

　したがって、透過光の吸収で測るに適した安定性、再現性のある且安価なガラス又はプラスチックの開発が望ましい。